Болезни аквариумных рыб

Корзюков Ю А

Глава I. Незаразные болезни

 

 

Незаразные болезни возникают в результате воздействия факторов внешней среды. Для экзотических рыб, содержащихся в аквариумных условиях, такой средой является в первую очередь вода.

Практика показывает, что чаще всего причиной незаразных заболеваний и гибели аквариумных рыб бывает неумение создать необходимые температурные и гидрохимические режимы. В результате возникают простудные заболевания, асфиксия (кислородное голодание), газовая эмболия (закупорка кровеносных сосудов пузырьками газа), отравления и др.

Вторым немаловажным фактором в содержании аквариумных рыб является кормление. В аквариумных условиях рыбы не могут выбрать корм, как это наблюдается в естественных условиях, кормление зависит всецело от аквариумиста. Неполноценное кормление рыб приводит к нарушению обмена веществ и возникновению таких заболеваний, как киста половых желез, ожирение внутренних органов, воспаление желудочно-кишечного тракта (гастроэнтерит) и т. д.

Определенное место среди незаразных болезней занимают отравления рыб ядохимикатами, попадающими в аквариумы с живым кормом, с препаратами, применяемыми при борьбе с насекомыми.

Транспортировка и ничем не обоснованная частая пересадка из одного аквариума в другой являются причинами травматизации кожного покрова, жаберного аппарата и плавников, а иногда скелета и внутренних органов рыб.

Ихтиофаги (гидра, жук-плавунец, щитень и др.) — враги рыб; попадая в аквариум с плохо отсортированным кормом, наносят им механические повреждения.

Профилактика незаразных болезней довольно проста: необходимо создать рыбам нужные температурные и гидрохимические режимы, организовать правильное и разнообразное кормление, а также до минимума свести случаи травматизации. Исключение составляет сколиоз рыб, причина возникновения которого пока не выяснена.

 

Воздействие на рыб неблагоприятных условий внешней среды

Наиболее важным и сложным в аквариумном рыбоводстве является создание оптимальных условий для жизни всех водных организмов, содержащихся в аквариуме. Оптимальные условия внешней среды складываются из многих факторов: газового и солевого состава воды; ее температуры; количества и видового состава растений; освещения; количества, качества и вида корма, даваемого рыбам; числа рыб и т. д.

В аквариуме постоянно происходят взаимосвязанные биологические и химические процессы, в результате которых одни животные и растительные организмы рождаются, другие погибают. Кроме рыб, растений, моллюсков и живого корма, даваемого рыбам, в аквариуме живут, размножаются и погибают миллиарды микроскопических организмов, увидеть которые можно, только вооружившись лупой или микроскопом. Это — различные бактерии, вирусы, инфузории, амёбы, коловратки, парамеции, стилохинии и др.

Растения, как и все живое, в процессе жизнедеятельности поглощают кислород, а выделяют углекислый газ. Вместе с тем на свету в результате фотосинтеза они вырабатывают кислород, а в темноте выделение его прекращается, поэтому в это время в воде накапливается углекислый газ. Отмершие листья, стебли и корни растений под действием биологических и химических процессов усваиваются самими же растениями, а также моллюсками, инфузориями и другими микроорганизмами. Некоторые виды рыб также поедают растения.

Растения необходимы рыбам в период икрометания, так как одни виды нерестятся в их мелколистных зарослях, другие откладывают икру на крупных листьях. Среди растений рыбы прячутся от своих агрессивных сородичей, самки — от чрезмерно активных самцов, мальки спасаются от взрослых рыб, чтобы они не съели их. Кроме того, растения имеют огромное эстетическое значение для оформления аквариума.

Огромная масса бактерий, живущих в толще воды и грунте, также оказывает большое влияние на внешнюю среду, перерабатывая продукты распада и жизнедеятельности растений, остатки корма, экскременты (испражнения) рыб, а инфузории, в свою очередь, питаются бактериями. Инфузорий поедают коловратки, амёбы, циклопы, дафнии и личинки икромечущих рыб. Моллюски питаются остатками корма, отмершими растениями, а также поедают другие продукты животного и растительного происхождения.

Температурный режим в аквариуме, газовый и солевой состав воды также имеют громадное значение в создании оптимальных условий содержания рыб.

Итак, в аквариуме все живые организмы тесно связаны друг с другом и каждый из них в какой-то мере зависит от другого. Только тогда, когда в водоеме количественное соотношение перечисленных организмов, их жизненная взаимосвязь, а также солевой, газовый и температурный режимы будут правильными, наступает так называемое биологическое равновесие, которое необходимо поддерживать постоянно. При биологическом равновесии вода в аквариуме остается всегда прозрачной, растения хорошо растут, рыбы прекрасно себя чувствуют, щедро раскрывая перед нами все разнообразие своей окраски. Характерными признаками установившегося биологического равновесия является наличие мшанок на стеклах аквариума и листьях растений.

Если аквариумисту удается сохранять такое равновесие в течение многих месяцев или нескольких лет, причем вода в аквариуме становится желтоватой или слегка бурой, то можно считать, что успех в его увлекательном занятии наполовину обеспечен.

Н.Ф. Золотицкий и А. А. Набатов — основоположники отечественной аквариумистики — такую воду назвали старой. Ее, а также немного грунта из «старого» аквариума добавляют в новый, чтобы быстрее наступило биологическое равновесие.

При создании оптимальных условий внешней среды для всех обитателей аквариума сравнительно редко приходится сталкиваться с болезнями рыб и их гибелью.

Температурный режим

Большинство видов аквариумных рыб тепловодные. Оптимальная температура для их содержания колеблется от 18 до 27°. Нельзя забывать, что рыбы относятся к холоднокровным животным и температура их тела соответствует температуре внешней среды, т. е. воды.

В книгах по аквариумному рыбоводству для каждого вида рыб описаны минимальные и максимальные границы температурного режима при их содержании и оптимальные при разведении.

В аквариумном рыбоводстве во избежание заболевания рыб отклонения температуры воды от оптимальной не должны превышать 2–3°. Поддерживать постоянную температуру круглый год довольно трудно. Для этого используют различного рода обогреватели и лампы накаливания.

Довольно часто аквариумы устанавливают на подоконниках или рядом с окнами, что весьма нежелательно. Летом на солнечной стороне вода в аквариуме перегревается, а ночью температура ее понижается до 12–15°. Такие скачки очень вредно влияют на организм рыбы. Зимой температура воды в таком аквариуме резко меняется в зависимости от температуры воздуха и направления ветра на улице. Переохлаждение приводит к простудным заболеваниям. При пониженной температуре воды все жизненные процессы в организме рыб замедляются, они прекращают активно питаться, становятся малоподвижными, защитные функции организма резко понижаются, в результате чего рыбы становятся более восприимчивыми к различного рода заболеваниям.

При содержании в воде с пониженной температурой рыбы плохо растут и развиваются, особенно молодь, органы размножения и продуцируют зрелые половые клетки и рыбы теряют способность к размножению. Если от них и получают потомство, то мальки часто погибают. При выращивании в условиях повышенной температуры рыбы рано достигают половой зрелости, потомство от них получается слишком слабым и почти неспособным к размножению.

В природе примером зимней спячки, или состояния анабиоза, служат золотой и серебряный караси, линь, карп, которые с наступлением осенних холодов прекращают питаться до весны, когда вода достаточно прогреется.

Характерные признаки простудного заболевания при содержании рыб при низкой температуре следующие: общая слабость, проявляющаяся малой подвижностью рыб; сжатие плавников; побледнение окраски тела; отказ от корма. Рыбы держатся около рефлектора или в верхних слоях воды возле обогревателя. Находясь на одном месте или медленно продвигаясь вперед, производят колебательные движения всем телом. Часто отдельные участки или все тело покрывается серовато-белым налетом (см. «Дерматомикоз»). При значительном повышении температуры воды рыбы находятся в верхних слоях, жадно заглатывая атмосферный воздух. Это объясняется понижением содержания растворимого в воде кислорода, необходимого для дыхания.

Особенно опасно пересаживать рыб из холодной воды в теплую и наоборот: в первом случае рыбы начинают беспорядочно метаться по аквариуму и нередко выпрыгивают из него; во втором — у рыб наступает шоковое состояние. Они медленно плавают на боку или неподвижно лежат на дне аквариума. Движения жаберных крышек замедляются или прекращаются совсем. Очень часто шоковое состояние оканчивается гибелью рыб.

При транспортировке рыб и пересадке их из одного аквариума в другой необходимо измерить температуру воды в обоих сосудах. Если разница температур более 2–3°, необходимо температуру воды в сосуде, откуда пересаживают рыб, довести до температуры воды аквариума, в который помещают рыб. Для этого рыб помещают в небольшую банку с водой из транспортируемого сосуда и опускают ее в аквариум так, чтобы она плавала. Когда температура воды в банке и аквариуме уравняется, рыб пересаживают в аквариум.

Недопустимо содержать вместе холодноводных и тепловодных рыб. Для постоянного наблюдения за температурным режимом необходимо в каждом аквариуме иметь термометр. Лучшие термометры — ртутные.

Газовый и солевой состав воды (гидрохимический режим)

Гидрохимический режим имеет важнейшее значение в жизни рыб и зависит от количественного содержания растворимых в воде газов и солей. Наладить в аквариуме нужный температурный режим и правильное кормление гораздо проще, нежели режим гидрохимический. Резкое повышение даже на короткое время содержания в воде углекислого газа (CO2), концентрации водородных ионов (рН), хлора или жесткости воды приводит к заболеваниям, а нередко и к массовой гибели рыб. Понижение содержания в воде кислорода (O2), жесткости или рН воды приводит к тем же результатам.

Основными гидрохимическими показателями в аквариумном рыбоводстве являются: содержание растворимого в воде кислорода (О2), углекислого газа (СО2), растворимого в воде хлора и его соединений; жесткость воды; активная реакция водородных ионов (рН); окисляемость. В Таблице 1 даны основные гидрохимические показатели воды для большинства аквариумных рыб.

ТАБЛИЦА 1

Гидрохимический режим, необходимый для рыб

Показатели Оптимальные величины
Кислород (O 2 ), мг/л 8,0-10,0
Углекислота (CO 2 ), мг/л До 8,0
Сероводород (H 2 S), мг/л 0
Активная реакция водородных ионов (рН), мг-экв/л 6,0–8,0
Жесткость общая, градусы 6,0-12,0
Окисляемость, мг О 2 /л 8,0-12,0
Азот альбуминоидный, мг NH 4 /л До 0,2
Нитриты, мг NO 2 /л До 0,2
Нитраты, мг NO 3 /л До 0,5
Фосфаты, мг P 2 O 5 /л 0
Железо общее, мг Fe/л 0
Хлориды, мг Cl/л До 2,0
Сульфаты, мг SO 4 /л До 2,0

Большинство этих показателей находятся в прямой зависимости друг от друга, и при повышении или понижении одного-двух из них в аквариуме нарушается биологическое равновесие, так необходимое для всех его обитателей и растений.

Содержание растворимого в воде кислорода

Большинство аквариумных рыб весьма требовательны к содержанию растворимого в воде кислорода, количество которого является одним из главных показателей химического состава воды. Растворимый в воде кислород имеет огромное значение как для дыхания рыб, так и для всех водных животных и растений. Исключение составляют немногие виды рыб, например лабиринтовые, которые благодаря лабиринту — добавочному наджаберному органу, способны усваивать кислород из атмосферного воздуха. Если этих рыб лишить возможности заглатывать атмосферный воздух (плотно закрыть доверху налитый водой сосуд), то они погибнут. У себя на родине, в странах Юго-Восточной Азии, лабиринтовые рыбы живут в водоемах, бедных кислородом.

Основным поставщиком кислорода в аквариуме являются растения, которые в результате фотосинтеза на свету выделяют кислород. Летом продолжительность светового дня позволяет растениям в достаточном количестве продуцировать кислород. Зимой интенсивность естественного освещения аквариума невелика. Количество кислорода, выделяемого растениями, становится недостаточным для дыхания рыб. Поэтому в аквариумной практике широко применяют различного рода осветители и аэрацию воды, т. е. обогащение ее кислородом путем продувания атмосферного воздуха.

На количество растворенного в воде кислорода влияет содержание в ней органических веществ — экскрементов рыб, несъеденного корма, продуктов жизнедеятельности моллюсков и других организмов; количество растений; освещенность аквариума и другие факторы. При этом много кислорода расходуется на окислительные процессы, постоянно происходящие в воде аквариума. Большое значение имеет плотность посадки, т. е. количество рыб, содержащихся в аквариуме. Не следует забывать, что кислород активно расходуют при дыхании все обитатели аквариума:

рыбы, моллюски, кишечнополостные, ракообразные, инфузории, бактерии, растения (в ночное время) и т. д. Температура воды также влияет на содержание растворимого в ней кислорода: чем выше температура воды, тем меньше в ней кислорода.

 

Болезни, вызванные недостатком растворимого в воде кислорода

Асфиксия

Этиология. При недостатке растворимого в воде кислорода у рыб наблюдается асфиксия (удушье), которая нередко заканчивается гибелью рыб. Признаки кислородного голодания: постоянное нахождение рыб у поверхности воды и жадное заглатывание воздуха ртом.

При длительном содержании рыб в бедной кислородом воде они плохо поедают корм, отстают в росте, органы размножения дегенерируют (вырождаются, их функционирование ухудшается из поколения в поколение), и рыбы теряют способность к размножению. Особое значение приобретает количество растворимого в воде кислорода в период размножения рыб. При недостатке кислорода икра не развивается, а родившиеся личинки или мальки погибают либо остаются «затянутыми» даже при качественном и обильном кормлении.

О содержании кислорода в воде можно судить по поведению малайской живородящей песчаной улитки Melonoides tuberculata, обитающей на дне аквариума и питающейся остатками не съеденного рыбами корма и их экскрементами. При резком снижении количества кислорода в воде она перебирается на стекла аквариума или растения.

Для предупреждения кислородного голодания и гибели рыб от асфиксии надо помнить, что:

• в аквариуме должно быть достаточное количество растений;

• зимой световой день необходимо поддерживать в течение 10–12 часов, летом — 15 часов;

• не следует давать рыбам лишнего корма;

• надо ежедневно удалять остатки не съеденного рыбами корма, отмершие части растений, погибшие водные организмы;

• нельзя допускать слишком уплотненной посадки рыб в аквариуме. Рекомендовать точное количество рыб в расчете на 1 л воды чрезвычайно трудно, поскольку это зависит от объема и формы водоема, наличия аэрации воды, вида рыб, их размеров и биологических особенностей. Так, Е. Amiacher, немецкий специалист по болезням рыб, считает минимальным количеством воды на одну рыбу 5 л; наш соотечественник, автор книги «Аквариумное рыбоводство» М.Н. Ильин рекомендует посадку рыб без аэрации воды в аквариуме емкостью 40–50 л в таком количестве, чтобы на каждую рыбу длиной до 5 см приходилось 2 л воды, длиной 8-10 см — 3–4 л и свыше 12 см — 810 л;

• надо удалять из аквариума лишние водные организмы (особенно моллюсков) при значительном из размножении;

• в воде нерестовых и выростных аквариумов, где содержат молодь рыб, не достигшую половой зрелости, количество растворимого кислорода должно быть больше, чем в аквариумах, где содержат взрослых рыб;

• желательно 1–2 раза в месяц проводить во всех аквариумах исследование воды на содержание в ней растворимого кислорода.

Газовая эмболия

В солнечные летние дни при активном выделении кислорода растениями и одновременной аэрации воды скапливается слишком большое количество растворимого в воде кислорода, избыток которого вызывает заболевание рыб, часто оканчивающееся их гибелью. Такое заболевание называется «газовая эмболия» .

Симптоматика и патогенез. Рыба ведет себя неспокойно, резко реагирует на внешние раздражители (приближение сачка и других предметов), наблюдается судорожное дрожание плавников и всего тела, движения жаберных крышек ослабевают и затем прекращаются совсем. Иногда наблюдается помутнение роговицы и хрусталика глаза, лепидортоз (ерошение чешуи) и разрушение плавников, от которых остаются только ости.

Кислород, в избытке поступая в кровеносную систему рыбы, скапливается в виде мелких пузырьков и вызывает закупорку сосудов. Попадая, в капилляры (тончайшие кровеносные сосуды), пузырьки кислорода по размерам оказываются больше диаметра этих сосудов. Происходит их закупорка, так как сила сердечного толчка недостаточна для проталкивания газа по капиллярам.

При вскрытии относительно крупных рыб из кровеносных сосудов, паренхиматозных органов (внутренние органы, не имеющие полостей и состоящие из паренхимы, — печень, селезенка, почки) и жабр, в силу скопления в них мельчайших пузырьков кислорода, выступает пенистая кровь.

Диагноз. Диагноз ставят на основании клинической картины, патологоанатомических изменений, которые находят при вскрытии рыб, и результатов исследования воды на содержание в ней растворимого кислорода.

Лечение и профилактика. Рыбы, пересаженные в аквариум, где содержание растворимого кислорода не превышает 10–15 мг/л, быстро выздоравливают.

Опыты, проведенные с гуппи, тигровыми меченосцами, черными моллиенезиями, тетра-фон-рио и кардиналами, показали, что при содержании в воде кислорода 28–30 мг/л рыбы погибают с проявлением описанных клинических признаков через 1.5 — 2 часа.

Для предупреждения гибели рыб от газовой эмболии нельзя допускать интенсивную аэрацию воды аквариума, густо засаженного растениями и при ярком продолжительном освещении.

Определение растворимого в воде кислорода

Принцип метода. Определение кислорода в воде основано на том, что при прибавлении к ней едкого натра (NaOH) и хлористого марганца (MnCl2) образуется гидрат закиси марганца [Mn(ОН)2], который при наличии в воде кислорода окисляется в гидрат окиси марганца [Mn(ОН)3]. Если затем прибавить к воде соляную кислоту (HCl), то гидрат окиси марганца растворяется, образуя хлорный марганец (MnCl3). Однако хлорный марганец непрочное соединение и быстро переходит в хлористый марганец (MnCl2) с выделением свободного хлора (Cl2). При прибавлении к жидкости йодистого калия (KI) происходит реакция замещения в нем йода хлором. Количество выделившегося йода эквивалентно количеству свободного кислорода, содержащегося в исследуемой воде.

Выделившийся йод определяют раствором гипосульфита натрия. По количеству гипосульфита натрия, израсходованному на титрование, устанавливают количество растворенного в воде кислорода.

Лабораторная посуда: склянки с притертыми пробками емкостью 100–150 л; пипетки Мора на 50 мл; градуированные пипетки на 10, 5 и 1 мл; колбы емкостью 100 и 250 мл; бюретки на 25 и 50 мл; цилиндры мерные на 100 мл; палочки и воронки стеклянные.

Реактивы:

Раствор хлористого марганца (MnCl2): 40 г MnCl2 растворяют в 100 мл дистиллированной воды и фильтруют через бумажный фильтр.

Раствор едкого натра с йодистым калием (NaOH+KI): 32 г едкого натра и 10 г йодистого калия растворяют в 100 мл дистиллированной воды. Едкий натр может быть заменен едким калием (КОН).

Концентрированная соляная кислота(HCl) или 25 %-ная серная кислота (Н2SO4). Кислоту растворяют в воде постепенно, все время размешивая жидкость и добавляя кислоту к воде.

Гипосульфит (серноватистокислый натрий, Na2S2O3), 0,01н. (Сантинормальный раствор) раствор: растворяют 2,5 г Na2S2O3 в 1 л дистиллированной воды.

1 %-ный раствор крахмала: 1 г крахмала или чистой картофельной муки тщательно размешивают в 20 мл холодной воды, добавляют к 80 мл кипящей дистиллированной воды и кипятят несколько минут.

Йодноватокислый калий(KIO3), 0,01 н. раствор: на аналитических весах отвешивают 0,3567 г KIO3, переносят реактив в мерную колбу объемом 1 л и растворяют в небольшом количестве дистиллированной воды. После полного растворения KIO3 в колбу добавляют дистиллированную воду точно до метки 100 мл и тщательно перемешивают. Готовый раствор хранят в темной склянке.

Техника определения. Склянкой емкостью 150–250 мл с очень узким горлышком берут пробу воды у самого дна аквариума. Воду необходимо брать так, чтобы в склянку не попадали экскременты рыб, остатки корма и другие частицы, находящиеся на дне. Сразу после взятия пробу воды переливают в склянку емкостью 100–150 мл с притертой пробкой так, чтобы между пробкой и водой не оставалось ни одного пузырька воздуха. Затем приступают к фиксации кислорода. Для этого пробку открывают, в воду пипеткой (для каждого раствора отдельной) вносят 1 мл раствора хлористого марганца и 1 мл смеси едкого натра с йодистым натрием или калием. Указанные растворы выливают из пипеток в нижний слой пробы. Склянку закрывают и содержимое тщательно взбалтывают.

По изменению цвета жидкости можно ориентировочно судить о количестве растворимого в испытуемой воде кислорода. Если его в воде много, раствор буреет; если мало, — раствор не изменяет цвет.

После этого пипеткой вносят на дно 2 мл концентрированной соляной кислоты или 3 мл 25 %-ной серной кислоты. Склянку закрывают, содержимое вновь взбалтывают и приступают к титрованию жидкости гипосульфитом. Для этого пипеткой Мора или мерным цилиндром из склянки берут 50 мл испытуемой жидкости, переливают ее в колбу и титруют 0,01 н. раствором гипосульфита до появления светло-желтого окрашивания жидкости, хорошо заметного на белом фоне бумаги, лежащей под колбой. Затем в смесь добавляют 1 см? крахмала (если при фиксации кислорода исследуемой воды растворами хлористого марганца и смеси едкого натра с йодистым калием жидкость не буреет, то раствор крахмала вливают сразу же перед титрованием, отчего она становится темно-синей, и титруют до осветления.

Расчет. Установив количество израсходованного на титрование гипосульфита, определяют содержание растворимого в воде кислорода по формуле:

х = 1,117 * П * К,

где х — количество растворимого в воде кислорода, мг/л;

1,117 — постоянный коэффициент;

П — количество гипосульфита, израсходованного на титрование, мл;

К — поправочный коэффициент гипосульфита.

Определение поправочного коэффициента гипосульфита. В колбу для титрования вносят 10 мл 0,01 н. раствора KIO3 и 0,5 г сухого йодистого калия (KI). После растворения последнего добавляют 2 мл концентрированной соляной кислоты или 3 мл 25 %-ной серной кислоты. Полученную жидкость титруют гипосульфитом, как и пробу на кислород. Затем количество взятого 0,01 н. раствора KIO3 (10 мл) делят на количество миллилитров гипосульфита, израсходованного на титрование. Полученный результат является поправочным коэффициентом гипосульфита.

Жесткость воды

Жесткость воды определяется количеством растворенных в ней солей кальция и магния. При незначительном содержании их воду называют мягкой, при большом количестве — жесткой. Различают общую, постоянную и временную жесткость воды. Сумма постоянной и временной жесткости составляет общую жесткость. Постоянная жесткость воды зависит от содержания в ней сульфатов и хлоридов кальция и магния, временная жесткость — от содержания в ней бикарбонатов кальция и магния. Обычное кипячение воды приводит к выпадению солей кальция и магния в осадок, чем в значительной степени снижается жесткость воды. Наглядным примером тому служит накипь, образующаяся на стенках чайников и самоваров.

Жесткость выражается суммой миллиграмм-эквивалентов ионов кальция и магния в 1 л воды. 1 мг-экв жесткости, или 1° жесткости, отвечает содержанию 20,04 мг/л Са или 12,16 мг/л Mg. В ряде стран жесткость воды измеряется в градусах жесткости. В аквариумном рыбоводстве жесткость воды наиболее удобно выражать в русских или немецких градусах, которые равны 0,35663 мг-экв/л.

Различают воду: очень мягкую — 0–4°, мягкую — 4–8°, средней жесткости — 8-12°, жесткую — 12–18° и очень жесткую — 18–30°

Большинство аквариумистов пользуются водопроводной водой, жесткость которой непостоянна и зависит от материковых пород, времени года, количества атмосферных осадков. Например, в Москве жесткость воды от 4 до 12°, в Ленинграде вода значительно мягче — 2–3°, в Одессе — 12° и выше.

Солевой состав воды влияет на количество углекислоты, растворенной в воде. В жесткой воде, т. е. содержащей много солей кальция и магния, всегда мало свободной углекислоты, а в, мягкой — ее значительно больше.

Жесткость воды имеет большое значение для физиологического состояния рыб. Одним видам рыб необходима мягкая вода, другим — средней жесткости или даже жесткая. Следует учитывать, что при пересадке рыб из старой воды в свежую и наоборот они резко реагируют на изменение ее жесткости: наблюдаются скачкообразные движения, судороги, выпрыгивание из воды и нередко гибель рыб. Наибольшее значение жесткость воды имеет в период размножения рыб. Например, неоновые рыбы и филомены нерестятся в очень мягкой воде (от 0,5 до 4°), гетеробарбусы и серпасы — в мягкой (4–5°), менее прихотливы грими (2,5–7°), а такие рыбы, как фонарики, могут размножаться как в мягкой, так и в жесткой воде.

В аквариуме с многовидовым составом рыб трудно установить жесткость воды, необходимую для каждого вида в отдельности. Неудачи в этом случае чаще всего связаны с солевым составом воды.

Наличие в аквариуме большого количества моллюсков, различных ракушек и раковин, содержащих соли кальция, способствует повышению жесткости воды. В связи с этим присутствие в аквариуме их в большом количестве нежелательно.

Аквариумисту нужно уметь определять жесткость воды, а также составлять воду нужного солевого состава.

Метод определения общей жесткости воды с помощью трилона Б

Принцип определения. По количеству трилона Б — натриевой соли этилендиаминотетрауксусной кислоты (порошок белого цвета), пошедшего на титрование пробы воды с индикатором эриохромом черным Т, рассчитывают содержание растворенных в ней солей кальция и магния. Так как индикатор меняет свою окраску не только от изменения концентрации ионов кальция и магния, но и в зависимости от рН раствора, в титруемый раствор добавляют буферную смесь (NH4OH + NH4Cl), поддерживающую рН около 10.

Реактивы:

Раствор трилона Б, 0,05 н. раствор: растворяют 9,3 г трилона Б в дистиллированной воде с последующим доведением объема до 1 л.

Буферный раствор: 20 г химически чистой NH4Cl растворяют в дистиллированной воде, добавляют 100 мл 20 %-ного раствора NH4OH и доводят объем дистиллированной водой до 1 л.

Раствор индикатора: 0,5 г эриохрома черного Т растворяют в 10 мл буферного раствора и доводят объем 96 %-ным этиловым спиртом до 100 мл.

Ход анализа. В коническую колбу емкостью 200–250 мл наливают 50 мл исследуемой воды, добавляют 5 мл буферной смеси и 10–15 капель индикатора эриохрома черного Т (до появления интенсивного вишнево-красного цвета). При непрерывном покачивании колбы пробу титруют раствором трилона Б. По мере прибавления трилона Б вишнево-красный цвет переходит в лиловый. С этого момента титрование следует проводить медленнее. Окончание титрования устанавливают по появлению синего цвета с зеленоватым оттенком.

Расчет. Содержание растворимых в воде солей кальция и магния вычисляют но формуле:

где х — количество растворимых в воде солей кальция и магния, мг-экв/л;

v — количество трилона Б, пошедшее на титрование, мл;

0,05 — нормальность трилона;

1000 — пересчет на 1 л воды;

v 1 — объем исследуемой воды, мл.

Для перевода в градусы жесткости полученную цифру умножают на 2,8.

Определение общей жесткости лучше проводить по таблице 2, составленной В.П. Дацкевичем. В таблице нужно найти цифру, равную количеству трилона Б, пошедшему на титрование. В левой (вертикальной) графе указаны градусы жесткости, в верхней (горизонтальной) — десятые доли градуса. Таблица составлена для анализа, проведенного в 100 мл воды 0,1 н. раствором трилона Б или 0,05 н. раствором, но при исследовании 50 мл воды.

Чтобы приготовить воду нужной жесткости для общего, а в особенности для нерестового аквариумов, сначала следует определить жесткость водопроводной и дистиллированной воды, из которых будет составляться вода для аквариума. Химически обессоленная вода имеет нулевую жесткость. Пользуясь данными таблицы 3, водопроводную воду смешивают с химически обессоленной и получают воду нужной жесткости. Предварительно водопроводную воду подогревают до 90° в течение 30 минут и охлаждают.

Пример. Для аквариума, где будут нереститься неоновые рыбы, требуется вода жесткостью 3°, а мы располагаем водопроводной водой, жесткость которой 8°. В левой вертикальной графе указана требуемая жесткость воды, в горизонтальной графе — жесткость водопроводной воды. В-горизонтальной графе под цифрой 8 находим цифру, соответствующую 3° жесткости вертикальной графы, — 1666. Значит, для получения воды жесткостью 3° к 1 л водопроводной воды нужно добавить 1666 мл дистиллированной. Далее делаем пересчет на все количество воды нерестового аквариума.

ТАБЛИЦА 2

Определение жесткости воды по расходу трилона Б

Жесткость воды, градусы Доли градуса
0,0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6 0,7 0,8 0,9
0 0,036 0,071 0,10 0,14 0,18 0,21 0,25 0,28 0,32
1 0,36 0,39 0,43 0,46 0,50 0,53 0,57 0,60 0,64 0,68
2 0,71 0,75 0,78 0,82 0,85 0,89 0,93 0,96 1,00 1,03
3 1,07 1,10 1,14 1,18 1,21 1,25 1,28 1,32 1,35 1,39
4 1,43 1,46 1,50 1,53 1,57 1,60 1,64 1,68 1,71 1,75
5 1,78 1,82 1,85 1,89 1,92 1,96 2,0 2,03 2,07 2,10
6 2,14 2,17 2,21 2,25 2,28 2,32 2,35 2,39 2,42 2,46
7 2,5 2,53 2,57 2,60 2,64 2,67 2,71 2,75 2,78 2,82
8 2,85 2,89 2,92 2,96 2,99 3,03 3,07 3,10 3,14 3,17
9 3,20 3,24 3,28 3,32 3,35 3,39 3,42 3,46 3,50 3,53
10 3,57 3,60 3,64 3,67 3,71 3,74 3,78 3,81 3,85 3,89
11 3,92 3,96 3,99 4,03 4,06 4,10 4,14 4,17 4,21 4,24
12 4,28 4,31 4,35 4,39 4,42 4,46 4,49 4,53 4,56 4,60
13 4,63 4,67 4,70 4,74 4,79 4,81 4,85 4,88 4,92 4,96
14 4,99 5,03 5,06 5,10 5,13 5,17 5,21 5,24 5,28 5,31
15 5,35 5,38 5,42 5,45 5,49 5,53 5,56 5,60 5,63 5,67

ТАБЛИЦА 3

Определение количества дистиллированной воды (мл), необходимой на 1 л водопроводной

Требуемая воды, градусы Жесткость водопроводной воды, градусы
6 7 8 9 10 11 12
3 1000 1333 1666 2000 2333 2666 3000
4 500 750 1000 1250 1500 1750 2000
5 200 400 600 800 1000 1200 1400
6 166 333 500 666 833 1000
7 142 222 429 571 714
8 125 250 375 500
Примечание. Если дистиллированная вода имеет нулевую жесткость, то при расчете необходимо сделать соответствующую поправку, а также проверить жесткость полученной воды

Содержание водородных ионов в воде (рН)

Небольшая часть молекул воды диссоциирована на водородные (Н) и гидроксильные ионы (ОН). В химически чистой воде молярные концентрации этих ионов равны и при 25° составляют 10~7 моль/л. Таким образом, величина произведения обеих концентраций равна 10~14. Эта величина остается постоянной и в присутствии веществ, при диссоциации которых образуются водородные и гидроксильные ионы. Поэтому вполне достаточно установить концентрацию одного из них. Практически определяют концентрацию водородных ионов.

Поскольку концентрация водородных ионов может иметь самое различное значение и подразделяться на несколько порядков, принято выражать ее величиной рН, представляющей собой десятичный логарифм концентрации ионов водорода, взятый с обратным знаком:

(Н+) = 10-рН, pH = — lg(H+).

Определение концентрации водородных ионов осуществляется в интервале от 1 до 10~14 мг-экв/л, что соответствует величине рН от 0 до 14; рН 7 отвечает нейтральному состоянию раствора. меньшие ее значения — кислотному, а более высокие — щелочному.

На концентрацию водородных ионов большое влияние оказывает жесткость и количество растворимого углекислого газа, а эти показатели в аквариумной воде постоянно меняются, даже в течение одних суток.

Аквариумист должен уметь определить концентрацию водородных ионов в воде, поскольку она оказывает огромное влияние на рост и развитие рыб и растений. Особое значение приобретает рН воды в периоды размножения рыб и развития икры и личинок (в первые три дня их жизни).

В аквариумной практике в зависимости от величины рН различают воду: рН от 1,0 до 3,0 — сильнокислая, рН от 3 до 5,0 — кислая, рН от 5,0 до 6,0 — слабокислая, рН от 6,0 до 7,0 — очень слабокислая, рН 7,0 — нейтральная, рН от 7,0 до 8,0 — очень слабощелочная, рН от 8,0 до 9,0 — слабощелочная, рН от 9,0 до 10,0 — щелочная и рН выше 10,0 — сильнощелочная. Для нормальной жизни и размножения большинства аквариумных рыб наиболее подходящей является вода, рН которой колеблется от 6 до 8, а для большинства растений оптимальным является рН от 6 до 6,5.

 

Заболевания рыб при нарушении рН воды

У рыб через несколько часов пребывания в кислой воде (рН 3–5) наблюдается возбужденное состояние, переходящее затем в угнетенное. Сокращается частота сердечных ударов и дыхательных движений жаберных крышек: рыбы принимают боковое положение или плавают вверх брюшком, на жаберных лепестках и кожном покрове интенсивно образуется свернувшаяся слизь, чем объясняется более бледная окраска всего тела или появление белых пятен на отдельных его участках. Слизеобразование на жаберных лепестках тормозит процесс дыхания, так как на них скапливается большое количество механических загрязнителей воды, поднятых со дна аквариума. В результате в организме накапливается большое количество углекислоты, оказывающее токсическое действие и вызывающее асфиксию. Тело погибших рыб свернуто кольцом, жаберные лепестки и крышки плотно сжаты, ротовое отверстие закрыто.

Щелочная среда (рН выше 9) вызывает беспокойное состояние рыб, выражающееся в нарушении координации движений, судорожных явлениях, учащенном дыхании. Рыбы мечутся и нередко выпрыгивают из аквариума. Клетки кожного покрова набухают и выделяют прозрачную, несвертывающуюся в отличие от слизи при заболевании рыб, находящихся в кислой воде, слизь. Жаберные лепестки также выделяют большое количество слизи. Нередко у рыб наблюдается помутнение роговицы глаза, и они слепнут. Плавники веерообразно расправлены.

В густо заселенных растительностью аквариумах с интенсивным освещением рН резко повышается (до 9—12). В этом случае очень быстро наступает гибель рыб в результате асфиксии. Сдвиг водородных ионов в щелочную сторону может быть вызван накоплением аммиака за счет повышенного содержания в аквариумах органических веществ.

Особенно опасно пересаживать рыб из очень слабокислой или нейтральной воды в щелочную и наоборот.

Выздоровление рыб после создания оптимального гидрохимического режима довольно продолжительное — 15–45 дней.

Для предупреждения заболевания рыб и их гибели от низкого или высокого рН аквариумист должен знать, какой рН воды необходим для разводимых им рыб, и должен уметь определять его. Для аквариумистов наиболее приемлемым методом количественного определения концентрации водородных ионов является колориметрический, основанный на свойствах органических красителей, называемых индикаторами, изменять свою окраску в зависимости от концентрации водородных ионов. Определенную трудность представляет приготовление стандартной цветовой шкалы и универсального индикатора.

Определение рН воды можно проводить в школьных кабинетах химии и биологии, а также дома, приобретя необходимые для этого стеклянную посуду и химические реактивы.

Существуют электрометрический и фотоколориметрический методы определения рН воды, но они требуют специальной аппаратуры и могут быть проведены только в лабораторных условиях.

Метод определения рН смешанным индикатором

Реактивы:

Универсальный индикатор: 1) 0,04 г сухого метилового красного тщательно растирают в фарфоровой чашке с 6 мл 0,01 н. раствора NaOH, смывают смесь дистиллированной (не содержащей СО г) водой в мерную колбу емкостью 100 мл, добавляют 20 мл этилового спирта и доводят объем дистиллированной водой до метки 100 мл; 2) 0,01 г бромтимолового синего растирают с 3,7 мл 0,01 п. раствора NaOH, смывают смесь дистиллированной водой в мерную колбу емкостью 50 мл, прибавляют 10 мл этилового спирта и доводят объем дистиллированной водой до метки 50 мл. Приготовленные растворы индикаторов сливают вместе и тщательно смешивают. Хранят универсальный индикатор в темной химически чистой посуде с притертой пробкой и в темном прохладном месте.

В кислой воде индикатор дает красную окраску, в щелочной — синюю.

Стандартная цветная шкала. Для сравнения с испытуемой водой готовят стандартную цветную шкалу из цветных солей (хлоридов кобальта, железа меди и сульфата меди) путем сочетания их кислых растворов:

1) хлористый кобальт — CoCl2 6H2O (59,5 г в 1 л 1 %-ного раствора HCl);

2) хлорное железо — FeCl3 6H2O (45,05 г в 1 л 1 %-ного раствора HCl);

3) хлорная медь — CuCl2 2H2O (400 г в 1 л 1 %-ного раствора HCl);

4) сернокислая медь — CuS04 5Н2О (200 г в 1 л 1 %-ного раствора HCl).

Приготовленные растворы солей в количествах, согласно данным таблицы 4, разливают в стеклянные пробирки одинакового диаметра из бесцветного стекла, закрывают резиновыми пробками и хранят в темном месте.

ТАБЛИЦА 4

Соотношение реактивов для приготовления стандартной цветной шкалы

pH CoCl 2 6H 2 O FeCl 3 6H 2 O CuCl 2 2H 2 O CuSO 4 5H 2 O Дистиллированная вода
4,0 9,60 0,30 - - 0,10
4,2 9,15 0,45 - - 0,40
4,4 8,05 0,65 - - 1,30
4,6 7,25 0,90 - - 1,85
4,8 6,05 1,50 - - 2,45
5,0 5,25 2,80 - - 1,95
5,2 3,85 4,00 - - 2,15
5,4 2,60 4,70 - - 2,70
5,6 1,65 5,55 - - 2,80
5,8 1,35 5,85 0,5 - 2,75
6,0 1,30 5,50 0,15 - 3,05
6,2 1,40 5,50 0,25 - 2,85
6,4 1,40 5,00 0,40 - 3,20
6,6 1,40 4,20 0,70 - 3,70
6,8 1,90 3,05 1,00 0,40 3,65
7,0 1,90 2,50 1,15 1,05 3,40
7,2 2,10 1,80 1,75 1,10 3,25
7,4 2,20 1,60 1,80 1,90 2,50
7,6 2,20 1,10 2,25 2,20 2,25
7,8 2,20 1,05 2,20 3,10 1,45
8,0 2,20 1,00 2,00 4,00 0,70

Пример. Для приготовления раствора с концентрацией водородных ионов (рН), равной 6.4, нужно к 1.4 мл раствора CoCL2 добавить 5 мл раствора FeCl3, 0.4 мл раствора CuCl2 и 3.2 мл дистиллированной воды.

Ход анализа. Концентрацию водородных ионов в аквариумной воде определяют следующим образом: в пробирку наливают 5 мл исследуемой воды, прибавляют 0,1 мл универсального индикатора и взбалтывают; исследуемая вода окрашивается в определенный цвет, который сравнивают с окрасками содержимого пробирок цветной шкалы до совпадения их и таким образом устанавливают концентрацию водородных ионов в воде.

Определение рН воды при помощи индикаторных бумажек

Индикаторную бумажку смачивают в испытуемой аквариумной воде и по изменившемуся цвету определяют рН воды по бумажной цветной шкале.

Недостатком этого метода является определенное отклонение результата от действительной концентрации водородных ионов в испытуемой воде

Окисляемость воды

Окисляемость воды — показатель взвешенных и растворенных в воде органических веществ. Чем выше окисляемость воды, тем меньше кислорода содержится в ней.

При плохом санитарном состоянии аквариума и чрезмерном кормлении рыб в нем накапливается большое количество органических веществ. Это понижает содержание кислорода в воде, так как значительная его часть расходуется на окислительные процессы. В результате в аквариуме нарушается биологическое равновесие, необходимое для нормальной жизнедеятельности всех водных организмов, — в огромном количестве развиваются бактерии, образуя видимую невооруженным глазом бактериальную муть. На осмотическое дыхание бактерий также расходуется кислород. Понижение содержания кислорода в аквариуме вызывает кислородное голодание у рыб и может привести к их гибели.

Для предупреждения повышения окисляемости воды аквариумисту рекомендуется придерживаться правил, описанных в разделе «Содержание растворимого в воде кислорода».

Метод приблизительного определения окисляемости воды

Реактивы:

Перманганат калия (KMnO4), который окисляет содержащиеся в воде органические вещества.

Серная кислота (H2SO4). Окисление ведут в кислой среде, так как в ней перманганат калия отщепляет больше кислорода.

Ход анализа. В пробирку наливают 10 мл исследуемой воды и прибавляют 0,5 мл серной кислоты в разведении 1:3 и 1 мл 0,01 н. раствора перманганата калия. Смесь хорошо перемешивают и оставляют в покое на 20 минут при температуре выше 20° или на 40 минут при температуре от 10 до 20°. После этого окраску раствора в пробирке при рассмотрении сбоку сравнивают с таблицей приблизительной окисляемости воды (табл. 5).

ТАБЛИЦА 5

Приблизительная окисляемость воды

Цвет жидкости в пробирке при рассмотрении сбоку Окисляемость воды, мг O 2 на 1 л
Яркий лилово-розовый 1
Лилово-розовый 2
Слабый лилово-розовый 4
Бледно-лилово-розовый 6
Бледно-розовый 8
Розово-желтый 12
Желтый 16 и выше

Более точные методы определения окисляемости воды описаны в специальных руководствах по гидрохимическим исследованиям.

Содержание углекислого газа в воде

Немаловажное значение в газовом режиме аквариумной воды имеет углекислый газ. В воде он находится в трех видах: свободном, полусвязанном (бикарбонаты) и связанном (карбонаты). В аквариуме Наибольшее количество углекислого газа накапливается под утро.

Много его содержится в аквариумах с недостаточно ярким освещением и с большим содержанием органических веществ, перенаселенных рыбами и другими водными организмами, поскольку все они в процессе дыхания выделяют углекислоту.

На содержание углекислоты влияют температура и жесткость воды: чем выше температура, тем меньше углекислоты, в жесткой воде (12–14°) свободной углекислоты мало, а в мягкой (1–5°) — значительно больше.

 

Заболевания рыб при повышенном содержании углекислого газа

Повышенное количество углекислоты в воде вызывает интоксикацию организма рыбы; концентрация 28–30 мг/л — ее гибель.

При интоксикации наблюдаются общее беспокойства рыб с резким нарушением координации движений, учащенные дыхательные сокращения жаберных крышек, неестественное положение тела (брюшком кверху или плавание на боку), после чего наступает смерть.

При вскрытии рыб, погибших от отравления углекислым газом, находят, что жаберные крышки плотно прилегают к телу в отличие от случаев гибели рыб при асфиксии, когда они широко раскрыты.

Для предупреждения повышенного содержания углекислого газа в воде аквариума необходимо: не допускать скопления остатков несъеденного корма; обеспечить достаточное освещение; не перенаселять рыбами, моллюсками и другими водными организмами; сажать водную растительность.

Определение содержания свободной углекислоты в воде

Реактивы:

0,1 н. раствор едкого натра (NaOH).

1 %-ный спиртовый раствор фенолфталеина.

Ход определения. На склянку емкостью 200 мл предварительно наносят метку, соответствующую объему 100 или 150 мл; доверху заполняют ее исследуемой водой, следя за тем, чтобы не было поглощения углекислоты из воздуха, и закрывают пробкой так, чтобы под пробкой не осталось пузырьков воздуха. Перед началом исследования склянку открывают и осторожно сливают или отсасывают воду пипеткой до метки 100 или 150 мл. Затем пипеткой добавляют 0,1 мл 1%-ного спиртового раствора фенолфталеина, склянку закрывают пробкой и содержимое осторожно взбалтывают. После чего жидкость титруют 0,1 н. раствором едкого натра до слабо-розового окрашивания, не исчезающего в течение 2 минут.

Расчет. Количество свободной углекислоты в воде вычисляют по формуле:

где х — содержание свободной углекислоты в 1 л воды, мг;

П — количество 0,1 н. раствора NaOH, израсходованное на титрование, мл;

К — коэффициент поправки для 0,1 н. раствора NaOH; в среднем равен единице;

2,2 — количество CO2, соответствующее 1 мл 0,1 н. раствора NaOH, мл;

1000 — коэффициент пересчета на 1 л;

v — объем испытуемой воды.

Содержание хлора в воде

Хлор и его соединения вызывают отравления рыб, нарушая процесс газообмена. Вначале жаберные лепестки покрываются слизью, затем слизь образуется на поверхности кожного покрова тела рыбы. Нарушение газообмена вызывает интоксикацию организма рыбы, в симптоматике которой можно различить два периода: в первом периоде рыбы становятся беспокойными, совершают резкие вращательные движения, пытаясь выпрыгнуть из аквариума; во втором, наоборот, рыбы не реагируют на внешние раздражители. Смерть наступает внезапно.

При вскрытии видимые изменения обнаруживают только на жабрах: анемичность, а также разрушение жаберных лепестков.

Особенно опасно повышенное содержание хлора (больше 0,05-0,1 мг/л) для личинок и мальков рыб. Их гибель наступает через 2–3 часа, в то время как для взрослых рыб эта концентрация остается безвредной длительное время. Концентрация хлора 0,03-0,05 мг/л убивает икру рыб в период инкубации.

Поскольку основным водоисточником аквариумов является водопроводная вода, которую дезинфицируют путем хлорирования (особенно в теплое время года), аквариумисту необходимо знать приемы освобождения воды от хлора. Хлор обладает способностью улетучиваться из воды. Достаточно оставить водопроводную воду в широкой стеклянной или эмалированной посуде на 1–2 суток, как содержание в ней хлора оказывается безвредным для рыб. Процесс освобождения воды от хлора ускоряется при ее подогревании до 90° в течение 30–40 минут.

Нельзя доливать аквариумы водой, не освобожденной от хлора, при профилактической или санитарной чистке взамен испарившейся воды, а тем более полностью заменять ею старую аквариумную воду.

Недопустимо создавать проточность хлорированной воды в аквариумах, где содержатся холодноводные рыбы или живой корм

Смена воды

Для нормального развития рыб и предупреждения ряда заболеваний необходимы в воде определенный химический состав и биологическое равновесие, поддерживаемое на протяжении многих лет. Обычно такую воду называют старой; меняют ее в случаях освежения, испарения воды, чистки стекол, грунта аквариума и т. д. лишь частично — не более одной трети от общего объема. Причем даже частичная замена воды не должна резко изменять газового и солевого состава ее. Использовать для этих целей неотстоявшуюся водопроводную воду, тем более, если температура новой и старой воды отличается больше чем на 2–3°, недопустимо.

В аквариумном рыбоводстве полную замену старой воды производят исключительно редко. Даже при массовой гибели рыб ее полностью не меняют, о чем будет сказано при описании отдельных болезней. При полной замене воды необходимо быть уверенным в том, что новая вода отвечает всем гидрохимическим показателям, необходимым для имеющихся видов рыб. Причем нужно стараться приблизить эти показатели к тем, которые были у заменяемой воды, если, конечно, они не были причиной заболеваний или гибели рыб.

Иногда рыб долгое время содержат в воде с не подходящим для них солевым и газовым составом. Однако организм рыб адаптируется (приспосабливается) к новым условиям. Такая рыба, помещенная в воду даже с оптимальными для нее гидрохимическими показателями, может заболеть и даже погибнуть.

Таким образом, распространенное среди начинающих аквариумистов мнение о необходимости частой смены воды как обязательном условии для нормального содержания экзотических рыб — глубоко ошибочно. Частая смена воды в аквариумах может явиться причиной заболевания и гибели рыб. Исключение составляют немногие виды рыб, для содержания которых постоянно требуется свежая отстоявшаяся вода.

Освещение аквариума

Правильное и достаточное освещение аквариума обусловливает нормальный гидрохимический режим, рост растений и способствует созданию оптимальных условий для жизни рыб. При интенсивном освещении прямыми солнечными лучами усиливается процесс фотосинтеза, особенно в аквариумах, густо населенных растениями, что приводит к резкому повышению рН воды и может вызвать гибель рыб. В предутренние часы в этом случае, наоборот, наступает дефицит кислорода с накоплением в воде большого количества углекислого газа, что может привести к гибели рыб от асфиксии или интоксикации. При интенсивном солнечном освещении нарушается и температурный режим, что особенно заметно в летний период, когда температура воды в аквариуме в дневные часы может повышаться до 30° и более, а в ночное время понижаться до 18–20°.

При высокой температуре воды и интенсивном освещении в аквариуме активно размножаются микроскопические сине-зеленые водоросли (Cyanophyceae) и нитчатка, которые, активно участвуя в процессах фотосинтеза, отрицательно влияют на гидрохимический состав воды. Сине-зеленые водоросли развиваются как в мягкой, так и в жесткой воде (от 4 до 25°), повышая концентрацию водородных ионов. Они находятся во взвешенном состоянии, покрывают растения, грунт и стенки аквариума сине-зеленым или буро-зеленым липким, легко снимающимся налетом. Вода при этом приобретает зеленый цвет, растения и обитатели аквариума плохо просматриваются через стекла. Подобное явление можно наблюдать в естественных водоемах. Существует выражение: «пруд зацвел». Это значит, что в жаркий летний период в пруду развилось большое количество сине-зеленых водорослей, в результате чего вода приобрела зеленый цвет. Если из такого пруда зачерпнуть стакан воды, то можно отчетливо различить массу плавающих в ней мелких зеленых частиц. В прудах и озерах, где рыбы имеют возможность свободно мигрировать и выбирать себе участки с наилучшим гидрохимическим режимом, в предутренние часы во время «цветения» наблюдаются заморные явления, а порой и гибель рыб от асфиксии и интоксикации углекислым газом.

Для борьбы с сине-зелеными водорослями применяют два метода: биологический и химический. При биологическом методе в затемненный на некоторое время аквариум помещают веслоногих рачков (дафний), которые поедают сине-зеленые водоросли. Химический метод заключается во внесении в воду аквариума антибиотика пенициллина в концентрации 10 000 ЕД (единиц действия) на 1 л воды. Через каждые двое суток антибиотик снова вносят в аквариум в дозе 2500 ЕД на 1 л воды. В течение восьми дней все сине-зеленые водоросли погибают, после чего их удаляют из аквариума при помощи резинового шланга или стеклянной трубки. На высшие водные растения и рыб пенициллин токсического действия не оказывает. Применяют также 3 %-ную борную кислоту в дозе 1 мл на 1 л воды. Рыб и растения оставляют в аквариуме.

В связи с отрицательным влиянием интенсивного солнечного освещения на гидрохимический состав не рекомендуется устанавливать аквариумы на окнах или в непосредственной близости от них. Кроме того, установленный на окне аквариум теряет свое эстетическое назначение. Рыбы просвечиваются насквозь так, что можно различить контуры скелета и внутренних органов. Да и растения тянутся к свету, показывая аквариумисту «спину». В комнате с ярким солнечным освещением аквариум обычно устанавливают боковым стеклом к окну в 2–3 м от него. В комнате с окнами, выходящими на север, аквариум устанавливают так же, но на расстоянии одного метра от окна.

При недостаточном освещении аквариума растения значительно замедляют свой рост, покрываются коричневато-бурым налетом, состоящим из диаптомовых микроводорослей, и в результате необходимый для дыхания рыб кислород продуцируют в незначительном количестве. Это ведет к нарушению химического состава воды и возникновению заболеваний рыб.

Лучшим способом создания правильного светового режима в аквариуме является смешанное освещение — естественное (солнечное) и искусственное.

В естественных условиях рыбы и растения получают только верхний свет. Такой же свет является наилучшим и для населения аквариумов. Ни одно верхоплавающее растение не будет расти хорошо при недостаточном верхнем освещении.

Большинство аквариумистов пользуются верхним искусственным освещением, а осветитель сдвигают к передней лицевой стенке аквариума. Применяют обычные лампы накаливания различной мощности или люминесцентные лампы белого света (БС) и теплого белого света (ТБС). Лампы накаливания монтируют в отражатели различного вида и формы. При таком освещении рыбы полностью раскрывают перед аквариумистом все разнообразие своей окраски; растения, посаженные в грунт, тянутся вверх, в сторону лицевого стекла, а верхоплавающие растения прекрасно растут, защищая при этом мальков от взрослых рыб, а последних — от драчливых особей. Верхоплавающими растениями можно затенять растения, посаженные в грунт, но требующие менее яркого освещения, и наоборот.

Многие аквариумисты пользуются лампами накаливания и для обогрева. Это далеко не лучший способ обогрева аквариумов, так как при выключении освещения ночью температура воды понижается больше, чем на допустимые 2–3°, что приводит к нарушению дыхания и простудным заболеваниям рыб.

Таким образом, правильное и достаточное освещение необходимо создать в аквариуме не только для поддержания постоянного биологического равновесия, но и для предупреждения многих заболеваний рыб.

 

Болезни, вызываемые неправильным кормлением

От правильно организованного кормления рыб во многом зависит их физиологическое развитие, способность к размножению и качество получаемого от них потомства. Нельзя забывать, что разные виды рыб требуют соответствующего корма. По биологическим и экологическим особенностям большинство аквариумных рыб питаются беспозвоночными животными, рыбами (хищники) и различными микро- и макрорастениями.

Главным условием правильного кормления рыб является составление разнообразного рациона, состоящего из живого корма. Так, личинок икромечущих рыб выкармливают «живой пылью», представляющей многие виды простейших Protozoa: инфузорий, коловраток и т. д. Мальков кормят представителями класса ракообразных — Crustacea. В основном к ним относятся два отряда: Copepoda — веслоногие рачки и Cladocera — ветвистоусые рачки. Наибольшее значение приобрели ветвистоусые рачки, поскольку они, встречаются в наших водоемах круглый год. Чаще всего аквариумисты используют представителей родов Diaptomus и Cyclops, обитающих во многих озерах, прудах, ямах и канавах, заполненных водой.

Представители веслоногих рачков получили собирательное название — дафнии. Они в больших количествах размножаются летом во многих стоячих водоемах, начиная от водохранилищ и кончая лужами и ямами с застоявшейся водой. Наиболее питательными для рыб являются плоские рачки рода Simocephalus, имеющие красноватый цвет.

Взрослых рыб кормят мелким и крупным мотылем, а также ракообразными. Мотыль — это личинки нескольких видов комаров семейства звонцов — Chironomidae sin. Tendipedidae. Представителем крупного мотыля является личинка комара-дергуна Chironomus plumosus. Добывают мотыль со дна заиленых прудов, озер, рек и водохранилищ, где он обитает. Это весьма питательный корм, поскольку кровь личинок содержит значительное количество гемоглобина. Часто мотыль зарывается в грунт аквариума, где окукливается. Из грунта выходит темного цвета куколка, которая поднимается к поверхности воды и выползает на растения, находящиеся над водой. Оболочка куколки лопается, и из нее вылетает комар. Если в аквариуме, накрытом стеклом, содержатся экзотические щучки, то очень интересно наблюдать, как они выпрыгивают из воды, хватая сидящих на внутренней стороне покровного стекла комаров. Кстати, эти виды комаров не жалят людей и животных, и их можно не опасаться.

Мальков и мелких взрослых рыб кормят мелким резаным мотылем. Аквариумисты практикуют консервирование мотылей высушиванием и затем используют их для кормления рыб.

Коретра — личинка комара из рода Chacborus — является хорошим кормом только для средних и крупных рыб. Имеет ряд преимуществ: она не зарывается в грунт аквариума, а постоянно находится в толще воды во взвешенном состоянии; ее легко транспортировать, завернув во влажную тряпку или бумагу; она неделями живет в стеклянной посуде с холодной водой. Добывают ее в тех же водоемах, что циклопов и дафний.

Аквариумисты применяют для кормления молоди и взрослых рыб трубочник — Tubifex, обитающий на дне прудов, рек и озер, откуда его и добывают. Трубочник необходимо часто промывать и ежедневно дважды менять воду, в которой его хранят, поскольку он, как правило, обитает в водоемах, загрязненных сточными водами промышленных и пищевых предприятий.

Многие аквариумисты в домашних условиях разводят представителя олигохет — горшечного червя энхитреуса, а также микрокорм — мелких (1–2 мм) гельминтов, представителем которых является нематода Turbatrix. Злоупотреблять энхитреусом при кормлении рыб нельзя, так как последние жиреют. Турбатриксом кормят мальков рыб.

Все виды живого корма нужно давать рыбам небольшими порциями. Взрослых рыб кормят 2 раза в день, молодь — 3–4 раза по мере поедания ею корма. Не всегда мотыль переходит в следующую стадию своего развития — куколку. В большинстве случаев не съеденный рыбами мотыль зарывается в грунт аквариума, где через некоторое время погибает и разлагается. При этом резко меняется рН грунта и воды, появляется бактериальная муть, что тут же сказывается на общем гидрохимическом режиме водоема. Аналогичное явление происходит при даче рыбам чрезмерных количеств дафний, циклопов, каретры и других видов живого корма, разница лишь в том, что этот корм разлагается не в грунте аквариума, а на его поверхности.

Только что пойманный в водоеме живой корм нельзя сразу скармливать рыбам. Его необходимо рассортировать по видам и размерам, пользуясь при этом двумя-тремя ситами с разным размером ячеек. Одновременно из такого корма отбирают непригодных для кормления рыб водных животных, которые, попав в аквариум, могут принести вред его населению (см. «Враги рыб, попадающие в аквариум с живым кормом», и «Отравления»).

Ракообразных нельзя хранить в только что взятой водопроводной воде, так как она содержит хлор, который быстро убивает дафний и циклопов. Водопроводную воду предварительно следует выдержать в широкой стеклянной или эмалированной посуде в течение суток. Кипяченую воду также нельзя использовать, так как в ней нет необходимых минеральных солей.

Не следует заготавливать живой корм из водоемов, в которых водится рыба, так как вместе с ним можно занести возбудителей болезней рыб. Живой корм, продаваемый в зоомагазинах и на рынках, добывают в разных водоемах городов, поселков и их окрестностей. Большинство их не изучено на наличие возбудителей инфекционных и инвазионных болезней рыб, которые довольно широко распространены в природе. На поверхности мотыля и трубочника могут находиться покоящиеся стадии возбудителей заболеваний рыб, относящиеся к типу простейших: ихтиофтириусы, хилодонеллы, костии и споровики. Кроме того, трубочник является промежуточным хозяином в цикле развития плоских червей — гвоздичников, которые вызывают у рыб кариофиллез. С профилактической целью мотыль и трубочник ежедневно несколько раз промывают водой и содержат при низкой температуре. Если их на двое-трое суток поместить в раствор трипафлавина (100 мг на 10 л воды), они освобождаются от названных паразитов. Представители рода Cyclops являются переносчиками возбудителей лигулеза, протеоцефалеза и ряда других болезней, вызываемых круглыми паразитическими червями. При скармливании малькам рыб коловраток не исключена возможность занесения в аквариум паразитических простейших.

Вода из водоема, в котором обитает свободноживущая рыба, представляет особую опасность при внесении ее в аквариум даже в самых незначительных количествах. В такой воде, как правило, содержатся возбудители инфекционных или инвазионных болезней, способные вызвать заболевания и гибель аквариумных, рыб. Живой корм вносят в аквариум только в сачке, а трубочник и мотыль — пинцетом, тем самым сводя до минимума возможность попадания в аквариум воды из водоемов.

Для избежания заноса возбудителей заразных болезней в комнатные водоемы аквариумисту рекомендуется стать постоянным покупателем одного и того же зоомагазина или продавца живого корма на рынке. Ни в коем случае нельзя использовать в корм аквариумным рыбам мальков диких рыб, поскольку они могут быть переносчиками ряда болезней.

Довольно часто аквариумисты используют в виде добавочного корма кусочки постной говядины, печени, филе свежемороженой морской рыбы, предварительно промытые и мелко измельченные. Для кормления мальков употребляют круто сваренный желток куриного яйца, молочный и яичные порошки. Такой добавочный корм следует готовить только из свежих продуктов. Иногда аквариумных рыб кормят свежей икрой пресноводных и морских рыб. Безусловно, этот вид корма очень калорийный, но икромечущие рыбы, привыкнув к нему, во время нереста полностью съедают свою икру. Это особенно свойственно многим видам пунтиусов.

Некоторые аквариумисты специально разводят малоценных, но весьма плодовитых гуппи, меченосцев и других живородящих рыб, мальками которых кормят более ценные виды рыб.

Чисто растительноядных видов среди аквариумных рыб нет, но моллинезии, некоторые хемиграммусы, теляпии и другие охотно употребляют в пищу различные водные растения. Прекрасным растительным кормом для этих рыб является нитчатка, которая растет почти во всех аквариумах, а при слишком ярком освещении заглушает более ценные растения, поселяясь па их листьях, стеблях и стеклах аквариума. Особенно это заметно в аквариумах, на боковые стекла которых подвешивают рефлекторы с электролампами.

При чистке стекол не обязательно очищать от нитчатки заднее стекло, с которого условно растительноядные рыбы будут охотно поедать ее. Кроме того, заросшее нитчатой и другими лившими водорослями заднее стекло создает прекрасный темно-зеленый фон, на котором лучше видна окраска рыб. Рыбы поедают также нежные части водных папоротников, рдестов, амбулий, вольфий и других растений. Перечисленные растения, а также салат, употребляемый людьми в пищу, можно скармливать рыбам, предварительно ошпарив кипятком и мелко измельчив до кашицеобразной массы.

Довольно часто рыб кормят консервированным, а точнее сухим кормом — дафниями, циклопами, гаммарусами и мотылем. Такой корм мало питателен, и применять его рекомендуется временно, пока нет живого корма.

Особое внимание начинающие и малоопытные аквариумисты должны уделять кормлению рыб. Многие считают, что для этой цели достаточно одного, в лучшем случае двух-трех видов сухого корма. Это неправильно. Для нормального развития организму рыбы требуются различные белки, углеводы, жиры, витамины и минеральные соли. Если минеральные соли могут в достаточном количестве содержаться в воде и грунте (при оптимальных условиях содержания рыб), то все остальные компоненты рыбы получают только с кормом как животного, так и растительного происхождения. Никакой сухой корм по питательным качествам не заменит живой. Да и рыбы поедают живой корм лучше, чем сухой.

Некоторые аквариумисты даже мальков рыб выкармливают сухим кормом. Естественно, что выращенная на одном сухом корме рыба плохо развита и не способна к размножению. Если от нее и получают потомство, то очень немногочисленное и слабое, которое превращается в «затянутых», рахитичных особей. Взрослые рыбы не достигают тех размеров, которые присущи данному виду, окраска их бледная, продолжительность жизни короткая. На цветном рисунке 1 показаны молодые вуалехвосты из одного помета. Верхняя рыба получала разнообразный живой корм, а нижняя — сухие концентраты.

Часто начинающие аквариумисты дают рыбам слишком много сухого корма. В результате рыбы не съедают его, корм размокает и опускается на дно, где гниет. При этом на окислительные процессы расходуется большое количество растворимого в воде кислорода, в результате повышается окисляемость воды, количество углекислого газа, изменяются рН и жесткость воды. Нарушается так необходимое для рыб биологическое равновесие. В громадных количествах развиваются бактерии, вода при этом становится мутной. Рыбы плавают у поверхности воды, жадно заглатывая воздух. В таких случаях малоэффективна интенсивная аэрация воды. Даже моллюски не успевают поедать остатки корма. Чтобы не допускать подобных явлений в своих водоемах, аквариумисту необходимо помнить, что сухой корм нужно давать очень малыми порциями, предварительно размяв его пальцами. Повторно корм дают только тогда, когда будет полностью съедена предыдущая порция его.

Опытные аквариумисты постоянно придерживаются правила:

рыб лучше недокормить, чем перекормить, поскольку они всегда найдут в аквариуме пищу в виде различных живых организмов и растений. Уезжая на несколько дней и даже недель, ни в коем случае нельзя давать рыбам живого или сухого корма в расчете на несколько дней вперед. Оставшись на некоторое время без корма, рыбы в худшем случае немного похудеют, но зато останутся живы. При этом в аквариуме сохранится биологическое равновесие.

Ожирение внутренних органов

Болезнь характеризуется развитием жировой ткани на внутренних органах и серозных оболочках рыб, а также жировым перерождением паренхиматозных органов.

Этиология. Чаще всего болеют рыбы в небольших по объему аквариумах, с плотной посадкой, при обильном, однообразном кормлении, особенно сухим кормом. Заболеванию способствует недостаток или отсутствие водной растительности. Такое содержание и кормление приводят к нарушению обмена веществ у рыб.

Симптоматика и патогенез. Болезнь протекает хронически и в начальной стадии остается незамеченной. Рыбы активно принимают корм, но малоподвижны. Болезнь, как правило, заканчивается гибелью рыб, так как нарушение жирового обмена — процесс необратимый.

Часто наблюдается увеличение брюшка рыбы в передней его части, как это видно у самца гуппи на цветном рисунке 2, I. В данном случае это результат увеличения печени вследствие ожирения.

В результате развития жировой ткани нарушаются функции внутренних органов и систем, развивается ряд патологических процессов. Ожирение семенников и яичников приводит к бесплодию рыб. Иногда наблюдается водянка полости тела, которая выражается в чрезмерном увеличении брюшка. Рыбы становятся чувствительными к малейшим изменениям условий внешней среды и более восприимчивыми к болезням инвазионного и инфекционного происхождения.

Патологоанатомические изменения. При вскрытии рыб внутренние органы (печень, почки, селезенка, сердце, половые органы, наружные стенки кишечника) покрыты жировой тканью, бледные, дряблой консистенции в результате перерождения их нормальных тканей.

Диагноз ставят на основании анамнестических данных (сведения об условиях содержания, кормления, о росте, развитии и т. д., получаемые специалистом от владельца животного или лица, ухаживающего за ним), патологоанатомического исследования с исключением инфекционных и инвазионных начал, для чего проводят паразитологические и микробиологические исследования.

Профилактика. Чтобы предупредить нарушения жирового обмена, рыбам создают оптимальные условия содержания и кормления: избегают уплотненных посадок (чтобы они могли свободно плавать); умеренно кормят, особенно сухим кормом. В аквариуме обязательно должна быть водная растительность.

Воспаление желудочно-кишечного тракта

Этиология. Болезнь наблюдается при скармливании рыбам недоброкачественного живого корма, пойманного в загрязненных различными сточными водами водоемах, а также при кормлении их сухими дафниями, гамарусами, мотылями и при частой даче искусственно разводимых горшечных червей — энхитреусов. Сухие корма трудно усваиваются и вызывают воспаление слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта рыб.

Симптоматика. Рыбы охотно едят корм, но остаются при этом вялыми, окраска кожных покровов тускнеет. При воспалении желудка брюшко рыбы слегка увеличено, однако это может быть и при других болезнях или при созревании половых продуктов. Одним из характерных видимых признаков воспаления кишечника является покраснение анального отверстия. Каловые массы имеют нитевидную форму с большим количеством в них кровянистой слизи.

Диагноз. Окончательный диагноз устанавливают при патологоанатомическом вскрытии рыб и осмотре желудочно-кишечного тракта. Слизистые оболочки при этом воспалены, набухшие, с большим количеством точечных кровоизлияний. Следует исключить заразные болезни. С этой целью проводят микробиологические и паразитологические исследования.

Лечение и профилактика. Болезнь легко излечима. Для этого достаточно перевести рыб на разнообразное полноценное кормление живыми гидробионтами. Не следует добывать живой корм в водоемах, куда поступают сточные воды промышленных и бытовых предприятий.

Киста половых желез

Этиология. Киста (опухоль с жидким или полужидким содержимым) половых желез образуется в результате слишком длительного раздельного содержания самцов и самок, а также чрезмерного, однообразного кормления их сухими концентратами.

Симптоматика и патогенез. Болезнь, как правило, протекает хронически и часто обнаруживается слишком поздно. Икра и молока превращаются в жижеобразную массу, из-за чего брюшко рыбы сильно увеличивается в объеме. Создается впечатление, что рыба готова к нересту (цветной рис. 3, I). Образовавшаяся в половых органах жидкая масса, постоянно увеличиваясь, давит на половые органы, нарушая тем самым их функцию и обменные процессы в организме в целом.

Кисты в запущенной форме приводят к бесплодию рыб и к их гибели.

Лечение и профилактика. В начальной стадии заболевания кисту можно удалить. Для этого рыбу кладут вверх брюшком в обильно смоченную водой вату и очень осторожными поглаживающими движениями пальцев стараются выдавить содержимое кисты из анального отверстия. Такая несложная операция часто приносит успех, рыба остается живой, но не всегда у нее сохраняется способность к размножению. Другие методы лечения этой болезни не разработаны.

Предупреждение заболевания сводится к полноценному кормлению рыб разнообразным живым кормом и своевременному спариванию производителей.

 

Отравления

Причинами отравления рыб в аквариуме могут быть различные факторы. Довольно часто при изготовлении аквариумов используют каркасы из коррозийных металлов. В результате окислительных процессов каркасы покрываются коррозией, которая резко изменяет химический состав воды, что приводит к нарушению деятельности жаберного аппарата и неправильному газообмену в организме рыбы. В этом случае для предупреждения заболевания каркасы покрывают водоустойчивым лаком.

При соединении стекол с каркасом аквариума применяют различные по составу и приготовлению замазки, состоящие из многих компонентов. После заполнения вновь изготовленного аквариума в воду из замазки поступают химические вещества, оказывающие токсическое действие на рыб. Во избежание этого пазы в местах соединения стекол с каркасом аквариума также покрывают водоустойчивым лаком. После высыхания лака аквариум заполняют водой, которую в течение двух суток меняют не менее двух раз. Затем в аквариум помещают грунт, заливают водой и сажают растения.

Часто воду для аквариумов берут из колодца или в родниках. В такой воде может содержаться большое количество железа, под действием которого у рыб разрушается жаберный аппарат: жаберные лепестки становятся анемичными и покрываются коагуляционной слизью, что приводит к асфиксии. Если нет другого водоисточника, колодезную или родниковую воду необходимо прокипятить. При этом соли железа, кальция и магния выпадают в осадок.

В помещениях, где много курят, в случае аэрации воды в аквариуме могут наблюдаться отравления рыб никотином. Для предотвращения этого помещения чаще проветривают, аэрацию воды прекращают.

При уничтожении в жилых помещениях вредных насекомых в аквариум могут попадать ядохимикаты (карбофос, хлорофос, гексахлоран и др.), которые вызывают отравление рыб. При проведении таких обработок аквариум нужно накрывать бумагой.

Отравления могут быть вызваны живым кормом, полученным из водоемов, загрязненных сточными водами промышленных, коммунальных и бытовых предприятий. При этом ядовитые вещества не всегда вызывают гибель гидробионтов (личинок хирономид, дафний и циклопов), а накапливаются в их организме. При кормлении рыб таким кормом ядовитые вещества вызывают отравления, характеризующиеся нарушением деятельности центральной нервной системы и нередко заканчивающиеся гибелью рыб. В отличие от теплокровных животных у рыб при отравлениях не всегда наблюдается воспаление желудочно-кишечного тракта.

В водоемы, где добывают живой корм для рыб, с дождевыми и паводковыми водами могут попадать минеральные удобрения и ядохимикаты, применяемые для борьбы с вредителями сельскохозяйственных культур, малярийным комаром и другими насекомыми. Они также накапливаются в организме гидробионтов в гораздо больших концентрациях, чем содержатся в воде.

При кормлении рыб живым кормом из нового водоема рекомендуется провести биологическую пробу. В течение трех суток дают корм малоценным рыбам, отсаженным в отдельную банку или аквариум, и внимательно наблюдают за их поведением. Если за это время оно не изменится, корм можно давать остальным рыбам. Гибель рыб, а также малейшие изменения в их поведении указывают на опасность кормления рыб таким кормом. Можно также чайную ложку ракообразных (дафний, циклопов) или другого корма (мотыль/трубочник, каретру) растереть в фарфоровой ступке с сахарным песком. Смесь перенести в стеклянную чашку, которую вместе с комнатными мухами поместить под марлевый или сетчатый колпак. Если в организме гидробионтов есть ядовитые вещества, все мухи гибнут с типичными признаками судорог и параличей.

Если в аквариуме наблюдается гибель рыбы и имеется подозрение на отравление живым кормом, то для подтверждения предполагаемого диагноза проводят биологическую пробу. Для этого внутренние органы погибших рыб (свежих, не разложившихся) растирают в ступке с сахарным песком и скармливают комнатным мухам. Гибель всех мух с типичными признаками судорог и параличей будет указывать на правильность предварительного диагноза.

При вскрытии погибших в результате отравлений ядовитыми химическими веществами рыб не всегда наблюдают воспаление желудка, одного или обоих отделов кишечника, характеризующееся набуханием слизистых оболочек, гиперемией или точечными кровоизлияниями.

С целью профилактики подобных отравлений не рекомендуется часто менять водоемы, из которых добывают корм для рыб.

 

Сколиоз

Сколиоз — довольно широко распространенная в аквариумном рыбоводстве болезнь, характеризующаяся искривлением позвоночного столба.

Этиология. По вопросу этиологии сколиоза в специальной литературе высказывают различные мнения. Одни исследователи считают, что искривление позвоночного столба является результатом тесного инбридинга (скрещивание особей, состоящих в близком родстве), приводящего в последующих поколениях к всевозможным уродствам; другие — результатом нарушения нормального развития яйцеклетки при кормлении самок концентрированными и комбинированными сухими кормами, а также результатом различного рода травм в раннем возрасте (личинки, мальки); третьи — результатом недостатка минеральных солей и продолжительного кислородного голодания.

По нашим наблюдениям, сколиоз наиболее часто диагностируют в аквариумах селекционеров, занимающихся разведением живородящих рыб, особенно при выведении новых пород гуппи. В результате тщательного изучения селекционной работы многих московских любителей гуппи оказалось, что искривление позвоночного столба рыб наблюдается во всех случаях близкородственного скрещивания производителей. Причем процент сколиозной молоди был выше в аквариумах с недостатком кислорода.

Сколиоз наблюдался в выростных аквариумах с плотной посадкой молоди рыб при недостатке кислорода, вызванном кормлением рыб комбинированным сухим кормом, особенно зимой, что часто приводит к образованию бактериальной мути. Жесткость воды в таких аквариумах, как правило, колебалась от 6 до 12°, что исключает недостаток солей кальция и магния.

У любителей, которые кормили рыб живым кормом, избегали близкородственного их скрещивания и разводили в аквариуме разновидовую водную растительность, сколиоз у рыб был в единичных случаях.

На основании наблюдений и литературных данных мы считаем, что тесный инбридинг является основной причиной сколиоза. Возникновению его в значительной степени способствует ряд факторов: однообразное кормление сухими концентрированными и комбинированными кормами, недостаток кислорода, разновидовой состав водной растительности, а также уплотненные посадки рыб. Травматический сколиоз встречается в единичных случаях.

Симптоматика. Признаки болезни у рыб чаще появляются в возрасте личинки и малька, реже у половозрелой рыбы. Иногда искривление позвоночника наблюдается у живородящих самок после выметывания мальков, что можно объяснить резким изменением внутрибрюшного давления.

Искривлен может быть любой участок позвоночного столба, иногда в нескольких местах, как в горизонтальном, так и в вертикальном направлениях (см. рис.).

Как правило, больные рыбы отстают в росте, хотя аппетит у них не понижен. Гибнут от сколиоза только личинки и мальки в первые две недели после рождения.

Лечение и профилактика. Лечение больных рыб не разработано. С целью предупреждения болезни не следует допускать близкородственного скрещивания рыб. Начиная с раннего возраста надо создать и поддерживать оптимальные температурный, гидрохимический режимы и обеспечить полноценный рацион, необходимый для будущих производителей в период их выращивания. Недопускать перенаселения аквариума и травматизации рыб, особенно в возрасте личинки и малька. В аквариуме должно находиться достаточное количество водной растительности. Не реже одного раза в неделю добавлять в аквариум свежую, отстоявшуюся воду. Жесткость воды понижать только до норм, требующихся данному виду рыбы в период размножения, инкубации икры, жизни и развития личинок и мальков. Больных сколиозом рыб выбраковывают.

 

Механические повреждения

Этиология. Рыбы могут быть травмированы агрессивно настроенными особями во время драк или брачных игр, при нападении ихтиофагов (гидр, пиявок, личинок стрекоз и т. д.), эктопаразитов (аргулюсов, лерний, писциколх, дактилогирусов, гиродактилусов и т. д.) — возбудителей инвазионных болезней.

Причиной травматических повреждений рыб могут быть острые части грунта (камни, галька). Это случается также при транспортировке и во время пересадки рыб из одного аквариума в другой. Наиболее опасны такие травмы для личинок и мальков, так как часто приводят к искривлению позвоночника (сколиозу) и гибели рыб.

Нередки случаи выпрыгивания рыб из не покрытого стеклом аквариума или из сачка при отлове и пересадке. При этом они получают порой незаметные для наблюдателя травмы, которые иногда оканчиваются гибелью рыбы или выметыванием мертвых, в лучшем случае сколиозных, мальков.

Симптоматика. Клиническое проявление травматизации различно: разрушение плавников, порезы, ранки, язвы, выпадение глазного яблока, потускнение окраски тела, утрачивание в местах повреждений чешуйного покрова, частичное разрушение жабр, как у Нанностомуса маргинатуса (см. рис.), подкожные кровоизлияния у Апистограммы Рамирези (см. рис.) и т. д.

На следующем цветном рисунке видна разница в интенсивности окраски здоровой рыбы и травмированной (внизу), которая содержалась вместе с агрессивными цихлидами.

Рыбы в силу биологической особенности способны восстанавливать утраченные органы и ткани. Однако в случаях постоянного антисанитарного состояния аквариумов и неустановившегося биологического равновесия любое, даже самое незначительное, повреждение целостности кожного покрова, плавников или жаберного аппарата опасно для рыб, поскольку при этом открываются ворота для проникновения в организм инфекционного и инвазионного начала. В местах повреждений поселяются гнилостная микрофлора или грибы родов Saprolegnia и Achlya, и пораженные участки долго не заживают.

Лечение и профилактика. Радикальным средством лечения механических повреждений является помещение больных рыб в аквариум с установившимся биологическим равновесием. В старой воде процесс регенерации происходит быстро, однако продолжительность лечения зависит от величины и степени механического повреждения.

В аквариуме должен поддерживаться соответствующий для данного вида рыбы температурный режим.

На период лечения полностью исключают все виды сухих кормов как первопричину нарушения биологического равновесия и источник интенсивного размножения гнилостных бактерий и грибов.

Препараты бактерицидного действия добавляют в аквариум в случаях, когда процесс заживления повреждений затягивается до 2–3 недель. Лучшим при этом является антибиотик бициллин-5 в дозе 300 000–500 000 ЕД на 100 л воды. (Методику его применения см. на стр. 150.) Лечение трипафлавином противопоказано, так как он обладает более продолжительным бактерицидным действием, что в данном случае следует избегать.

При интенсивном развитии в месте повреждения грибов Saprolegnia и Achlya применяют лечебные примочки, описанные в главе «Лечение больных рыб».

Для профилактики механических повреждений рыб следует избегать нанесения рыбам травм при тех или иных мероприятиях; удалять из аквариума особо драчливых рыб; регулировать количество самцов (особенно некоторых видов лабиринтовых рыб); обязательно накрывать аквариум стеклом; тщательно сортировать живой корм, удаляя из пего ихтиофагов; не допускать попадания в аквариум эктопаразитов рыб; убирать острые камни и гравий из грунта аквариума.

 

Враги рыб, попадающие в аквариум с живым кормом

С живым кормом в аквариум могут попасть разнообразные простейшие, кишечнополостные, плоские и кольчатые черви, моллюски, ракообразные, паукообразные, насекомые и их личинки. Многие виды этих животных являются врагами рыб.

Некоторые простейшие (Protozoa), локализуясь на поверхности тела рыб, жаберных лепестках (эктопаразиты) или живя во внутренних органах, в кровеносной системе, в глазном яблоке, мышечной и других тканях рыб (эндопаразиты), вызывают опасные заболевания рыб. Эти болезни описаны в разделе «Болезни, вызываемые простейшими». Наиболее опасным представителем типа кишечнополостных (Coelenterata) является гидра (Hydra fuska). Длина ее тела без щупалец достигает 1 см. Прикрепляется оно к стеклам аквариума и растений так называемой подошвой. Щупальца снабжены стрекательными капсулами, содержащими тонкие нити с ядом. Гидра особенно опасна для личинок и мальков рыб (рис. 1). Нападая на них, она при помощи стрекательных нитей сначала парализует жертву, а затем захватывает ее щупальцами и поглощает. При этом хищник значительно увеличивается в размере. У более крупных мальков гидра нарушает целостность кожного покрова, открывая тем самым ворота инфекции.

Гидра способна к очень быстрому размножению путем почкования. Попадая в выростной аквариум, где содержится молодь рыб, хищник быстро размножается, уничтожая мальков. Гидра светолюбива. Излюбленное место скопления гидр — ярко освещенное стекло аквариума. Эту биологическую особенность используют для борьбы с ней. Аквариум затеняют так, чтобы свет падал только на одно стекло или отдельную его часть. Гидры скапливаются на освещенном стекле, где их уничтожают механическим путем. Можно в затененный аквариум опустить стекло, плотно прижав его к ярко освещенной стенке. Гидры скапливаются на этом стекле, его вынимают и счищают с него гидр.

Хорошими биологическими санитарами в борьбе с гидрами являются молодые гурами. В аквариум, где много гидр, поселяют несколько молодых гурами, предварительно выдержанных па голодной диете. Рыб временно прекращают кормить, и голодные гурами быстро очищают водоем от хищника.

Для борьбы с гидрой применяют также медикаменты:

1) перекись водорода (H2O2).

Две чайные ложки 3 %-ного раствора перекиси водорода разводят в 100–150 мл воды и осторожно, тщательно перемешивая, выливают в аквариуме емкостью 10 л. Рыб из аквариума не удаляют. Одновременно производят аэрацию воды. Образующийся при этом в воде свободный кислород губительно действует на гидр. Недостатком этого метода является вредное действие перекиси водорода и продуктов её расщепления на некоторые растения (папоротники, перистолистник, кабомбу и др.);

2) сульфат аммония [(NH4)2SO4].

Препарат безвреден для рыб и растений. Его растворяют в воде аквариума из расчета 0,05 г сульфата аммония на 1 л воды. При этом гидры погибают в течение 3–5 дней;

3) продукты окисления меди.

В воду с противоположных стенок аквариума подвешивают два клубка медной проволоки. Необходимо, чтобы площадь соприкосновения проволоки с водой была по возможности большей. Медную проволоку, покрытую изоляционным лаком, следует очистить от последнего наждачной шкуркой. В воде происходит окисление меди; образующиеся при этом продукты окисления губительно действуют на гидру. Хищники постепенно теряют щупальца и падают на дно аквариума, а оттуда их по мере накопления собирают стеклянной трубкой или резиновым шлангом. После освобождения водоема от гидр клубки медной проволоки из аквариума удаляют;

4) азотнокислый аммоний (NH4NO3).

Мальков и молодь из аквариума удаляют. В течение 1–2 недель гидр интенсивно кормят дафниями, в результате чего они активно размножаются почкованием. В это время в аквариум вносят азотнокислый аммоний из расчета 0,6–1,0 г препарат на 10 л воды, предварительно полностью растворив его в 250–500 мл воды. Для ускорения перемешивания препарата на 10 минут включают аэрационную установку. На третьи сутки препарат в том же количестве вносят повторно. Температуру воды в аквариуме повышают на 3–5° на весь курс лечения. Гидраты погибают на 5—6-й день. После окончания курса лечения воду в аквариуме не меняют, поскольку препарат в указанных дозах не действует токсически на рыб, а водные растения его усваивают. Для них это хорошее удобрение.

Плоские черви (Plathelmintes), попадая в аквариум с живым кормом, уничтожают икру, личинок и мальков рыб. К ним относятся три вида плапарий: бурая (Planaria torva), черная (Polycoelis nigra) и реже встречающаяся крупная молочно-белая планария Dendrocoellum lacteum (рис. 2). В длину они достигают 2,5 см. Как правило, это ночные хищники. Для борьбы с ними применяют механический и биологический методы. В первом случае червей собирают пинцетом со стекол, растений и дна аквариума, или помещают на дно аквариума капроновый мешочек со свежим скобленным мясом. Планарии собираются на нем, довольно крепко прикрепляясь. Мешочек вынимают из аквариума и обрабатывают кипятком. Процедуру повторяют до полного удаления планарий из водоема. Во втором случае в аквариум поселяют несколько макроподов или гурами, предварительно выдержав их в течение 2–3 дней на голодной диете. Проголодавшиеся лабиринтовые рыбы поедают планарий.

Кольчатые черви (Annelida). Представителями их являются пиявки. Они снабжены двумя присосками, расположенными на концах тела.

В аквариум могут попасть рыбьи пиявки — Piscicola geometra (см. «Писциколез»), малая и большая ложноконские пиявки (крупные кольчатые черви, достигающие в длину соответственно 6 и 15 см, весьма прожорливые, способные нападать не только на молодь рыб, но и на взрослых особей), а также улитковые пиявки — Glossiphonia complata. Длина тела их до 3 см; поедают моллюсков, но для рыб не опасны. В аквариумах, где много моллюсков, улитковая пиявка поедает, как правило, только часть их тела, а оставшиеся ткани погибших моллюсков разлагаются, изменяя гидрохимический режим водоема.

Моллюски (Molluska). Создалось мнение, что, поскольку моллюски выполняют роль санитаров (очищают стекла от зарастания низшими водорослями, поедают не съеденный рыбами корм), присутствие их в аквариуме не только желательно, но и обязательно. Бесспорно, моллюски украшают и разнообразят аквариум и являются очень интересными объектами для наблюдения. Но надо помнить, что многие виды моллюсков, обитающих в естественных водоемах и прудах рыбоводных хозяйств, являются промежуточными хозяевами ряда возбудителей инвазионных болезней рыб. В прудовом рыбоводстве их всячески уничтожают.

В аквариумах любителей, где содержались экзотические улитки нескольких видов (обычная — Physa fontinalis и красная — Phisa rubra, малайская живородящая песчаная улитка — Melanoides tuberculata, крупные южноамериканские ампулярии — Ampularia gigas и роговые катушки — Planorbis corneus), мы наблюдали заболевание и гибель рыб (особенно пунтиусов суматранских). Единственным клиническим признаком болезни было незначительное увеличение брюшка. При вскрытии таких рыб и гельминтологическом исследовании желудочно-кишечного тракта в тонком отделе кишечника было обнаружено большое количество (от 8 до 65 экземпляров) мелких, круглых червей белого цвета. Длина их составляла 5–7 мм. После удаления всех моллюсков из аквариума (при этом условия содержания и кормление оставались прежними) гибель рыб прекратилась через 18 дней, а через месяц при исследовании кишечника только у отдельных рыб были обнаружены единичные гельминты (1–6 экземпляров).

Не следует забывать, что моллюски поедают икру рыб и при дыхании употребляют значительное количество кислорода. По нашему мнению, содержать в аквариуме большое количество моллюсков многих видов не желательно. Достаточно ограничиться двумя-тремя экземплярами одного вида на аквариум.

Моллюсков живородящую лужанку — Viviparus contectus и обыкновенного прудовика — Limnaea stagnalis (рис. 3) и других, пойманных в естественных водоемах, содержать в аквариумах с экзотическими рыбами нельзя.

Членистоногие (Arthropoda). К типу членистоногих (класс насекомых) относятся водяные клопы, жуки, личинки стрекоз и другие животные, питающиеся мелкими водными организмами, в том числе и молодью рыб., попав в аквариум, искусно прячется в зарослях растений, подстерегая добычу. Длина ее 3–4 см.

Ранатра , попав в аквариум, искусно прячется в зарослях растений, подстерегая добычу. Длина ее 3–4 см.

Плавт достигает в длину 12–16 мм. Хорошо плавает. Обладает болезненным укусом, парализующим тело мальков. Добычу захватывает передней парой конечностей.

Гладыш . Их несколько видов. Длина тела до 3,5 см. Также обладают болезненным укусом. Уничтожает молодь рыб.

Водяные жуки . Злейшими врагами рыб в естественных водоемах, а также в аквариумах являются жуки-плавунцы и их личинки. Питаясь различными водными животными, они нападают не только на мальков, но и на крупных рыб. Длина взрослого жука 3,0–4.5 см, личинок — до 6 см.

Личинки стрекоз . Стрекоза откладывает яйца на растения или на сырую илистую прибрежную часть водоема. Из яйца выходит личинка, которая живет на дне водоема, претерпевая несколько линек. Питается она водными животными, в том числе и молодью рыб. В последней стадии развития личинка под утро выползает на берег или на надводные части растений. Под действием солнечных лучей оболочка личинки лопается, и из нее выходит стрекоза, которая, обсохнув, начинает летать. Прячется личинка в зарослях растений, подстерегая добычу. Ловит ее, выбрасывая вперед специальный орган — хватательную маску. В длину личинка достигает 3 см.

Водяной клещ , относящийся к классу паукообразных, нападает на мальков рыб.

Ракообразные (Crustacea). К классу ракообразных относится рыбья вошь, или карпоед (Argulus foliaceus), который является опасным паразитом аквариумных рыб. Болезнь, вызываемая им, описана ниже под названием аргулез.

Бокоплав — хороший корм для взрослых рыб. Обитает в зарослях растений многих водоемов, длина 1,5 см. Присутствие его в аквариуме нежелательно, поскольку он является переносчиком инвазионных болезней рыб.

Ракушковый рачок рыбами не поедается, но сам нападает на личинок и мальков, несмотря на небольшую величину — 2 мм (рис. 11). Некоторые виды циклопов поедают личинок рыб. Более крупные мальки питаются этими же циклопами.

Щитень — крупный хищник, длина с усиками достигает 10 см.

Для предупреждения заноса в аквариум указанных врагов рыб необходимо тщательно просматривать и сортировать пойманный в водоемах живой корм. Многих из этих врагов рыб легко обнаружить невооруженным глазом и уничтожить. Не рекомендуется часто менять водоемы, из которых добывают живой корм, так как при этом увеличивается возможность заноса в аквариумы возбудителей опасных болезней — простейших, гельминтов и их личинок.

В водоемах, где водится дикая рыба, почти всегда присутствуют паразитирующие на них различные гельминты — представители моногенетических и дигенетических сосальщиков. Попав в аквариум, они переходят на экзотических рыб. (Болезни, вызываемые ими, описаны ниже.)